Transpiring, phytoncidal and gas-absorbing properties of indoor plants and their role in improving the air quality in preschool environments

Full Text

ОБОСНОВАНИЕ

Проблема микробного загрязнения воздушной среды в помещениях детских организаций, несмотря на прогрессивные инженерные решения в части разработки и практического внедрения современных систем вентиляции, остаётся актуальной, а в условиях пандемии COVID-19 она стала одним из ключевых факторов риска здоровью. Данная проблема актуальна для большинства регионов Российской Федерации, особенно в зимний период, когда проветривание помещений зачастую оказывается неэффективным. Использование комнатных растений с транспирирующими (испаряющими), фитонцидными (подавляющими рост и развитие болезнетворных бактерий) и газопоглотительными свойствами в организованных детских коллективах может стать перспективным направлением улучшения качественных характеристик воздуха в помещениях для детей.

Качество воздуха внутри закрытых помещений более важно для здоровья человека и его благополучия, чем качество воздуха вне помещений. Внутри жилых и производственных помещений человек проводит до 90% времени суток, поэтому качество внутренней воздушной среды затрагивает интересы всего населения. Ухудшение здоровья людей может произойти не только из-за некачественных строительных материалов, конструкций и изделий, но и низкой влажности воздуха. Токсичными являются материалы, в состав которых входят фенол, формальдегид (широко используется при производстве пластика и пластиковых окон), бензол, толуол (применяются в лакокрасочной промышленности). Интенсивное выделение летучих соединений из материалов обычно наблюдается в течение нескольких месяцев с момента их изготовления [1].

Отечественные и зарубежные исследования в области медицины и экологии подтверждают, что накопление загрязняющих агентов в закрытых помещениях приводит к необратимым последствиям для здоровья человека. Твёрдые частицы, проникающие в здание, летучие органические соединения, выделяющиеся из ковровых и синтетических материалов, а также углекислый газ, образующийся при дыхании человека, являются основными факторами, вызывающими проблемы с качеством воздушной среды в закрытых помещениях. Недостаточное проветривание помещения и неэффективность использования систем вентиляции создают благоприятные условия для накопления в воздушной среде микроорганизмов, в том числе условно-патогенных и патогенных, что приводит к снижению иммунитета и увеличивает вероятность возникновения инфекций. В частности, в дошкольных учреждениях низкая относительная влажность воздуха создаёт дополнительные риски здоровью, в том числе обострения хронических заболеваний органов дыхания у детей, имеющих данную патологию (бронхиальная астма, хронический бронхит и иные заболевания) [2].

В ряде исследований, проведённых в развитых странах, доказывается взаимосвязь качества воздушной среды в помещениях детских организаций и частоты заболеваемости детей острыми респираторными инфекциями и другими распространёнными болезнями органов дыхания [3, 4]. Для удаления загрязняющих веществ из воздушной среды в закрытых помещениях был разработан метод физико-химических очисток, имеющий ряд недостатков, связанных с дорогостоящим производством и обслуживанием соответствующего оборудования. Значительно более безопасным, доступным и экономически выгодным является альтернативный метод очистки воздуха в закрытых помещениях, основанный на антимикробном действии летучих веществ (фитонцидов), которые выделяются комнатными растениями в процессе их жизнедеятельности. Помимо антимикробного действия, фитонциды оказывают нормализующее воздействие на сердечный ритм, обмен веществ, процесс кровообращения, а также иммунную и нервную системы [1–3].

Несмотря на многолетние исследования, до сих пор не доведены до внедрения методы улучшения качества воздушной среды в закрытых помещениях, основанные на применении комнатных растений [5–11].

Эффективное использование растений для оздоровления воздушной среды требует оптимизации площади фотосинтетически активных органов и тщательного подбора видового состава. Некоторые растения выделяют млечный сок, который может вызывать аллергические реакции, или содержат шипы и иголки на концах листьев, которые могут нанести ребёнку травму. Качество воздуха в помещении в значительной мере зависит от площади листовой поверхности растений. Через эту поверхность растения осуществляют газообмен с окружающей средой, что помогает поддерживать оптимальный уровень кислорода в помещении и улучшает качество воздуха. Через устьице растения могут улавливать и удалять из воздуха некоторые вредные вещества, накапливающиеся в помещениях, такие как формальдегид и бензол [11]. Именно поэтому очень важно выбирать безопасные растения для закрытых помещений, особенно для помещений, где находятся дети. Однако в мировой литературе достаточно мало информации о влиянии на воздушную среду площади листовой поверхности и ассортименте растений, которые способны очищать воздух в закрытых помещениях без вреда для здоровья.

Цель исследования ― подбор комнатных растений с учетом их видового и количественного состава с целью улучшения воздушной среды в организованных детских коллективах и разработка рекомендаций по их установке и использованию.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Дизайн исследования

Проведено проспективное наблюдательное неконтролируемое исследование.

Критерии соответствия

Критерии включения

Комнатное растение, выращиваемое в детском дошкольном учреждении, должно быть безопасным для детей, неприхотливым и способным долгое время переносить тяжёлые для него условия. В результате анализа литературных данных были выбраны несколько видов, отвечающих установленным нами требованиям: хлорофитум хохлатый (Chlorophytum comosum), аспидистра высокая (Aspidistra elatior), бегония рицинолистная (Begonia ricinifolia), гибискус китайский (Hibiscus rosa-sinensis), каланхое блосфельда (Kalanchoe blossfeldiana), колеус блюме (Coleus blumei), мурайя экзотическая (Murraya exotica), нефролепис возвышенный (Nephrolepis exaltata), сансевиерия трёхполосая (Sansevieria trifasciata), циперус зонтичный (Cyperus alternifolius) [12–14]. Для выбора видов, наиболее подходящих для дошкольных организаций, были проведены исследования фитонцидных, газопоглотительных и транспирирующих свойств растений.

Критерии исключения

Первым критерием для исключения вида из списка растений, предполагаемых к использованию в детских дошкольных учреждениях, стала их токсичность, вторым критерием ― наличие на стеблях и листьях растения шипов/колючек, способных травмировать или вызвать раздражение кожных покровов. Помимо названных фактов, рассматривалась и аллергенность растений.

Условия проведения

Натурные исследования проведены на базе двух дошкольных образовательных организаций (ДОУ № 331 «Радуга», ДОУ № 360 «Журавушка»), расположенных на одной селитебной территории Ленинского района г. Новосибирска, Новосибирской области. Дошкольные организации, в которых проводилось исследование, построены по единому типовому проекту (16 групп; 320 детей). Площадь групповых составляет 56 м² (длина — 8 м, ширина — 7 м), высота — 3,2 м. Дошкольные организации функционируют по 12-часовому режиму работы. Изучение газопоглотительных свойств растений проводилось в лабораторных условиях ФБУН «Новосибирский научно-исследовательский институт гигиены» Роспотребнадзора в отделе токсикологии с санитарно-химической лабораторией.

Продолжительность исследования

Период исследования — 2019–2023 гг.

Методы регистрации исходов

Среди более чем 820 видов рассмотренных комнатных растений были выделены наиболее подходящие для детских дошкольных учреждений.

У избранных растений метрическим методом были определены размеры (высота, ширина), а также площадь листового аппарата с помощью портативного лазерного измерителя площади листа CI-202 (CID Bio-Science, США).

Изучение состояния воздушной среды дошкольных образовательных организаций проводили в натурных модельных условиях в период с 2019 по 2020 г. Для оценки фитонцидных свойств комнатных растений были проведены замеры содержания общего количества микроорганизмов (в КОЕ/м³) в групповых помещениях подготовительных и старших групп дошкольной образовательной организации. Точки отбора проб воздуха устанавливали по типу конверта (четыре точки по углам и пятая по центру). Отбор проб воздуха осуществляли в течение пяти рабочих дней 1 раз в час аспирационным методом с помощью откалиброванного, поверенного пробоотборного устройства ПУ-1Б. По стандартной методике было определено общее количество микроорганизмов ― путём визуального подсчёта колоний на поверхности стандартной дифференциально-диагностической питательной среды [15]. За норму брали СанПиН 2.1.3.2630-10, так как для помещений организованных детских коллективов нет регламентирующих норм [16].

В период проведения исследования количество детей в групповых помещениях не превышало гигиенических нормативов, площадной показатель помещения был более 2,0 м² на одного ребёнка. Системы воздухообмена работали в обычном режиме.

По итогам предварительного этапа исследования в групповых помещениях разместигли комнатные растения, и дальнейшие отборы проб воздуха проводили во время, соответствующее максимальным значениям содержания количества микроорганизмов в помещении.

Изучение транспирирующих свойств комнатных растений проводили в натурном исследовании в групповых помещениях дошкольных образовательных организаций, в период отсутствия детей. В групповые помещения была установлена метеостанция «Измеритель параметров микроклимата и углекислого газа EClerk-Eco» (Рэлсиб, Россия), фиксирующая показатели в заданное время и показывая их средние значения за 1 час. Замеры параметров микроклимата осуществлялись одномоментно во всех изучаемых групповых помещениях. Для оценки транспирирующей активности растений исследования проводились в групповых помещениях в период эпидемиологического подъёма заболеваемости детей при искусственном поддержании заданных параметров относительной влажности воздуха, что обеспечивалось дополнительной установкой увлажнителей. Первоначально оценка проводилась в отношении свойств Chlorophytum comosum. Растения устанавливались в помещениях с заданной относительной влажностью воздуха по четырём условиям ― 37,5±2,5%; 32,5±2,5%; 27,5±2,5%; 22,5±2,5%. Измерения проводились при разном количестве устанавливаемых растений с экспозицией, предшествующей снятию результатов не менее суток. В результате было установлено, что по условию 1 потребовалось 8 растений; по условию 2 — 16, по условию 3 — 22 и по условию 4 — 28 растений на 56 м² площади помещения.

Оценка свойств растений к поглощению формальдегида проводилась в лабораторных условиях с использованием затравочных камер, поддерживающих стабильные показатели концентрации формальдегида. В камерах объемом по 200 л размещались исследуемые растения: Chlorophytum comosum, Sansevieria trifasciata и Cyperus alternifolius. Площадь листового аппарата взрослых растений, используемых в эксперименте, существенно различалась (0,1 м²― у Chlorophytum comosum и Cyperus alternifolius, 0,2 м² ― у Sansevieria trifasciata). Из расчета, что площадь листового аппарата составляла 0,1 м² на 100 л, в камеры размещали по два растения Chlorophytum comosum и Cyperus alternifolius и по одному растению Sansevieria trifasciata. В контрольной камере замеры проводили без установки растений. Во все ингаляционные затравочные камеры с помощью ингалятора распыляли 10% раствор формальдегида. Концентрации формальдегида в камере устанавливали от 3 до 1,1 ПДК (предельно допустимых концентраций). Исследование проводили непрерывно, круглосуточно, с фиксацией концентрации формальдегида в затравочных камерах каждый час до снижения уровня 0,01 ПДК и ниже. Отбор проб воздуха из ингаляционных затравочных камер осуществляли с помощью поверенного универсального газоанализатора ГАНК-4 (НПО «Прибор», Россия). Содержание формальдегида в затравочных камерах записывали по средним значениям за 1 час. Исследования проводили в утреннее время, ежедневно в трехкратной повторности.

Этическая экспертиза

Протокол исследования не проходил оценку в этическом комитете.

Статистический анализ

Методы статистической обработки, полученные в ходе исследования, подбирались с учётом типа распределения данных. Количественные данные на предварительном этапе статистического анализа оценивали на нормальность распределения по критерию Колмогорова–Смирнова. Сравнение показателей в двух группах проводили с помощью t-критерия Стьюдента, для сравнения средних величин нескольких независимых выборок применяли дисперсионный анализ (ANOVA). За критический уровень значимости принимали уровень 0,001. Для проверки равенства средних в нескольких выборках применяли тест Краскела–Уоллиса (H-критерий). Для оценки статистической значимости различий между динамикой показателей в разных групповых ячейках и микробной обсеменённости воздуха использовали однофакторный дисперсионный анализ.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Изучению фитонцидных свойств растений предшествовал мониторинг динамики показателя общего микробного числа в течение дня. В результате было установлено, что данный показатель колеблется в диапазоне от 380 до 1200 колониеобразующих единиц на метр кубический. Максимальные значения, были отмечены в период отбора проб в 10.00, 11.00, 14.00 и 17.00. Исследования проводились в течение рабочей недели в 10 групповых помещениях. Полученные результаты по всем групповым помещениям были схожими. Это позволило сделать вывод о высокой изменчивости показателя в течение дня и необходимости его коррекции. Дальнейшие отборы проб воздуха при установке растений в групповых помещениях проводились в период регистрации максимальных значений общего количества микроорганизмов в единицу объема. Статистически значимых различий в динамике показателей в разных групповых ячейках в рабочие дни, когда проводили замеры, не выявлено (H-критерий, p=0,063; рис. 1).

 

Рис. 1. Динамика общего количества микроорганизмов в групповых ячейках в течение типового рабочего дня, КОЕ/м³.

Fig. 1. Total number of microorganisms over time in rooms during a typical working day, CFU/m³.

 

Из изученного ассортимента растений Chlorophytum comosum был наиболее неприхотлив в уходе, что крайне актуально для использования комнатных растений в организованных детских коллективах, поэтому его фитонцидная активность, установленная экспериментальным путём, была принята за эталон [6, 8, 11, 13]. Для оценки фитонцицидной активности и эффективного радиуса воздействия в пяти групповых помещениях устанавливалось различное количество растений – от 4 до 8 и проводились отборы проб воздуха на расстоянии до 9 м от места локации растений. Пробы отбирались после недельной экспозиции растений в групповых помещениях. В результате было установлено, что при установке шести растений Chlorophytum comosum, в точке, соответствующей 5 метрам, значения максимально приблизились к ориентировочному нормативному пределу в 500 КОЕ/м³. Пятикратный повтор эксперимента с количеством растений в 6 ед. позволил получить сходные значения показателей. Это позволило выдвинуть гипотезу, а в дальнейшем ее подтвердить в части установления значения фитонцидной активности и эффективного радиуса воздействия, который соответствует 5 метрам. Далее проведена оценка фитонцидной активности остальных растений при аналогичном подходе.

В результате было установлено, что все изучаемые растения обладают фитонцидной активностью, однако их активность уступала активности Chlorophytum comosum. Полученные результаты также подтвердили гипотезу о 5-метровом эффективном радиусе воздействия растений (табл. 1).

 

Таблица 1. Количество микроорганизмов на разных расстояниях от растений

Table 1. The number of microorganisms at different distances from the plants

Наименование растений Plant species	Расстояние от растений, м (КОЕ/м3) Distance from the plants, m (CFU/m3)
	0	3	5
Хлорофитум хохлатый | Chlorophytum comosum	380	420	480
Аспидистра высокая | Aspidistra elatior	420	460	500
Бегония рицинолистная | Begonia ricinifolia	450	500	580
Гибискус китайский | Hibiscus rosa-sinensis	500	580	640
Каланхое блосфельда | Kalanchoe blossfeldiana	500	580	640
Колеус блюме | Coleus blume	430	480	600
Мурайя экзотическая | Murraya exotica	420	460	480
Нефролепис возвышенный | Nephrolepis exaltata	420	460	550
Сансевиерия трёхполосая | Sansevieria trifasciat	580	600	620
Циперус зонтичный | Cyperus alternifolius	580	610	660

 

Средние значения показателей относительной влажности воздуха (в %) во всех групповых ячейках во все периоды наблюдений, за исключением 8.00, 9.00, 10.00 и 18.00, были ниже нижнего предела гигиенического норматива, регламентированного СанПиН 1.2.3685-21 для детей (40–60%), что свидетельствует об излишней сухости воздуха в помещениях (рис. 2). Однако различия в средних значениях относительной влажности воздуха, измеренной в разное время суток, были статистически незначимы (H-критерий, р=0,071).

 

Рис. 2. Показатели относительной влажности воздуха в групповых ячейках.

Fig. 2. Relative humidity indicators in rooms.

 

Расчёты показывают, что в групповой ячейке площадью 56 м² при фиксированной влажности воздуха 32,5% для её повышения до регламентированного уровня 40% и выше потребуется 16 взрослых растений Chlorophytum comosum с площадью листового аппарата 0,029 м². Для повышения значений относительной влажности воздуха до 40% и выше за счёт транспирирующей активности растений потребуется увеличение количества растений: например, Aspidistra elatior ― 6 единиц, Kalanchoe blossfeldiana ― 12 единиц, Coleus blumei ― 10 единиц.

Дисперсионный анализ с временной точкой измерения и наличием растения в камере в качестве независимых переменных с поправкой на температуру и влажность в камере показал достоверное (критерий Фишера, p=0,001) влияние взаимодействия этих факторов на концентрацию формальдегида. Средняя концентрация формальдегида в камере с растениями была достоверно ниже, чем в контроле (p=0,001). Динамика снижения концентрации формальдегида в камере с Chlorophytum comosum наиболее точно аппроксимировалась логарифмической регрессией с уравнением y=-0,006Ln(x)+0,0333; R²=0,9707; у Sansevieria trifasciata и Cyperus alternifolius наиболее точно аппроксимировалась линейной регрессией с уравнением y=-0,0003x+0,016; R²=1; y=-0,0001x+0,0131; R²=1.

Результаты исследования показали, что при концентрации формальдегида, равной 3 ПДК, одному растению Chlorophytum comosum потребуется 38 ч, чтобы снизить её до регламентируемого значения 0,01 ПДК. Sansevieria trifasciata потребуется 24 ч, чтобы при концентрации формальдегида 1,6 ПДК снизить её до регламентируемого значения 0,01 ПДК; Cyperus alternifolius ― 27 ч, чтобы снизить концентрацию формальдегида при концентрации 1,3 ПДК до регламентируемого значения 0,01 ПДК.

Таким образом, размещение в рабочей комнате детского дошкольного учреждения ассортимента комнатных растений с выраженными фитонцидными, газопоглотительными и транспирирующими свойствами приводило к устойчивому снижению показателей общего количества микроорганизмов и повышению влажности воздуха.

Анализ состава воздуха в ингаляционных затравочных камерах после распыления 10% раствора формальдегида в концентрации, превышающей в 3,0; 1,6 и 1,3 раза ПДК, показал, что в камере с растениями его концентрация приходила в норму через 1,5 и 1 сутки, а через сутки падала ниже порога обнаружения.

Подбор ассортимента комнатных растений с учётом их фитонцидных, транспирационных, газопоглотительных свойств и оценкой оптимальной площади листовой поверхности является перспективным направлением улучшения качества воздушной среды в закрытых помещениях [11, 17, 18].

ОБСУЖДЕНИЕ

Проведённое натурное исследование непосредственно в помещениях дошкольных образовательных организаций, позволило сформулировать, какое оптимизированное количество растений потребуется для снижения количества микроорганизмов с учётом площади листового аппарата растений и площади помещений на 1 м². Фитонцидная активность растений с площадью листового аппарата в 0,01 м² достигает 5 метров. Иностранные исследователи обосновывают взаимосвязь состава воздушной среды помещений дошкольных и общеобразовательных организаций с проявлением острых респираторных инфекций и других болезней органов дыхания [19, 20].

Представленный ассортимент комнатных растений обладает как газопоглотительными, фитонцидными, так и транспирирующими свойствами. При низкой относительной влажности воздуха в помещении комнатные растения увеличивают влажность до минимального значения гигиенического норматива 40%. Относительная влажность воздуха в помещении считается важным индикатором. Для благоприятного нахождения в закрытом помещении установлен уровень влажности от 30 до 60%, а для профилактики источника инфекции ― 40–60% [21]. В настоящее время доказано, что растения увеличивают относительную влажность воздуха в помещении [7, 8].

В модельных лабораторных условиях нами изучена газопоглотительная способность растений Chlorophytum comosum, Sansevieria trifasciata и Cyperus alternifolius, которые поглощают газообразный формальдегид до регламентированного уровня 1 ПДК. Сотрудниками Национального агентства по аэронавтике и исследованию космического пространства (National Aeronautics and Space Administration, NASA) на протяжении нескольких лет проводились исследования по применению комнатных растений для детоксикации воздуха в замкнутых и герметически изолированных пространствах для жизнеобеспечения людей. На сегодняшний день показана высокая эффективность 30 видов комнатных растений (Chlorophytum elatium, Aglaonema commutatum, Azaleaindica, Anthurium andreaenum, Arauca riaheterophylla, Begonia semperflorens, Dracaena deremensis, Codiaeum variegatum, Maranta leuconeuraи, др.) при снижении качества воздуха помещений некоторыми отравляющими веществами [22–25].

Y. Su, Y. Lang показали высокую эффективность Chlorophytum comosum по удалению формальдегида из состава воздуха. Основным механизмом удаления формальдегида Chlorophytum comosum является его накопление тканями растений и их переработки [26]. Полученные данные свидетельствуют о способности экстрактов листьев хлорофитума хохлатого удалять химические вещества (формальдегид, фенолбензол, толуол) из воздушной среды [7, 10, 27].

Проанализировав источники литературы, можно сделать вывод, что представленный ассортимент растений обладает положительными свойствами, не вызывает аллергических реакций, безопасен для детей и, кроме того, растения достаточно просты в уходе.

Таким образом, в нашем исследовании подтверждено, что фитонцидные, газопоглотительные и транспирирующие свойства растений в натурных и лабораторных условиях благотворно влияют на оптимизацию психоэмоционального состояния людей, способствуют снижению содержания углекислого газа в воздухе закрытых помещений и предотвращают снижение регламентированных показателей относительной влажности воздуха при активном использовании нагревательных приборов в зимний период года, что может являться одной из мер профилактики в условиях повышенного содержания микроорганизмов и химических элементов [6, 9, 10, 12, 17].

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Качество воздушной среды групповых ячеек характеризуется динамичностью показателей общего количества микроорганизмов и относительной влажности воздуха в течение рабочего дня при эксплуатации помещений в соответствии с режимом функционирования дошкольных образовательных учреждений, достигая в период отопительного сезона пиковых значений в условиях пребывания детей в помещениях более 2 часов без проветривания и влажной уборки.

В связи с благоприятным воздействием на воздух и наличием у комнатных растений фитонцидных, транспирирующих и газопоглотительных свойств можно говорить о необходимости размещения растений с площадью листового аппарата 2,5 м² на площадь помещения в достаточном количестве в дошкольных образовательных учреждениях. Растения обеспечивают регламентированные параметры микроклимата и газового состава воздуха в закрытых помещениях даже при сокращении времени их проветривания. Размещение растений с выраженными фитонцидными, газопоглотительными и транспирирующими свойствами, таких как Chlorophytum comosum, Aspidistra elatior, Begonia ricinifolia, Hibiscus rosa-sinensis, Kalanchoe blossfeldiana, Coleus blumei, Murraya exotica, Nephrolepis exaltata, Sansevieria trifasciata, Cyperus alternifolius, в помещениях детских организованных коллективов будет способствовать снижению рисков и профилактике заболеваемости у детей в закрытых помещениях.

ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ

Источник финансирования. Авторы заявляют об отсутствии внешнего финансирования при проведении исследования.

Конфликт интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.

Вклад авторов. Авторы подтверждают соответствие своего авторства международным критериям ICMJE (все авторы внесли существенный вклад в разработку концепции, проведение исследования и подготовку статьи, прочли и одобрили финальную версию перед публикацией). Наибольший вклад распределён следующим образом: Н.Ф. Чуенко, И.И. Новикова, Е.А. Новиков, О.А. Савченко, М.А. Лобкис ― концепция и дизайн исследования, интерпретация полученных данных и подготовка текста; Н.Ф. Чуенко ― получение первичных данных, статистическая обработка данных, дизайн исследования, написание текста статьи; Е.А. Новиков ― математическая обработка полученных данных и их интерпретация.

ADDITIONAL INFORMATION

Funding source. The study was carried out without financial support.

Competing interests. The authors confirm that they have no conflicts of interest.

Authors’ contribution. All authors made a substantial contribution to the conception of the work, acquisition, analysis, interpretation of data for the work, drafting and revising the work, final approval of the version to be published and agree to be accountable for all aspects of the work. N.F. Chuenko, I.I. Novikova, E.A. Novikov, O.A. Savchenko, M.A. Lobkis ― the concept and design of the study, interpretation of the data obtained and preparation of the text; N.F. Chuenko ― obtaining primary data, statistical data processing, research design, writing the text of the article; E.A. Novikov ― mathematical processing of the data obtained and their interpretation.

About the authors

Natalia F. Chuenko

Novosibirsk Scientific Research Institute of Hygiene; Novosibirsk State Agrarian University

Author for correspondence.
Email: natali26.01.1983@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-1961-3486
SPIN-code: 9709-3447
Russian Federation, Novosibirsk; Novosibirsk

Irina I. Novikova

Novosibirsk Scientific Research Institute of Hygiene

Email: novikova_ii@nig.su
ORCID iD: 0000-0003-1105-471X
SPIN-code: 3773-2898
Russian Federation, Novosibirsk

Maria A. Lobkis

Novosibirsk Scientific Research Institute of Hygiene

Email: lobkis_ma@niig.su
ORCID iD: 0000-0002-8483-5229
SPIN-code: 4387-9425
Russian Federation, Novosibirsk

Evgenii A. Novikov

Novosibirsk Scientific Research Institute of Hygiene; Novosibirsk State Agrarian University

Email: eug_nov@ngs.ru
ORCID iD: 0000-0002-0944-5394
SPIN-code: 2122-8605

Dr. Sci. (Biology), Associate Professor

Russian Federation, Novosibirsk; Novosibirsk

Oleg A. Savchenko

Novosibirsk Scientific Research Institute of Hygiene

Email: savchenkooa1969@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-7110-7871
SPIN-code: 1029-6168
Russian Federation, Novosibirsk

References

Supplementary files